蛋白提取是进行蛋白分析的重要一步，同时也是进行蛋白质其他分析的重要组成部分。越来越多的生物医药研究，将蛋白质分析作为某些重要疾病的突破方向来做，其重要性不言而喻。
1.溶液配制：
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裂解液配方：50mmol/L Tris-HCl pH8.0；150mmol/L NaCl；1％TritonX－100，100ug/ml PMSF）；1mol/L Tris-HCl（pH8.0） 2.5m；NaCl 0.438gTritonX－100 0.5m，加蒸馏水至 50m混匀后， 4℃保存。使用时，加入PMSF至终浓度为100ug/ml（0.87ml裂解液加入1.74mg/ml PMSF50μl）。
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PMSF配：1.74mg/ml (10mmol/L)PMSF；PMSF 0.174g加异丙醇 100m溶解后，分装于1.5ml离心管中，－20℃保存。
2.细胞裂解
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倒掉培养液，并将瓶倒扣在吸水纸上使吸水纸吸干培养液（或将瓶直立放置一会儿使残余培养液流到瓶底然后再用移液器将其吸走）。
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每瓶细胞加3ml 4℃预冷的PBS（0.01M pH7.2～7.3）。平放轻轻摇动1min洗涤细胞，然后弃去洗液。重复以上操作两次，共洗细胞三次以洗去培养液。将PBS弃净后把培养瓶置于冰上。
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按1ml裂解液加10ul PMSF（100mM），摇匀置于冰上。（PMSF要摇匀至无结晶时才可与裂解液混合。）
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每瓶细胞加400ul含PMSF的裂解液，于冰上裂解30min，为使细胞充分裂解培养瓶要经常来回摇动。
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裂解完后，用干净的刮棒将细胞刮于培养瓶的一侧（动作要快），然后用枪将细胞碎片和裂解液移至1.5ml离心管中。（整个操作尽量在冰上进行。）
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于4℃下12000rpm离心5min。（提前开离心机预冷）
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将离心后的上清分装转移倒0.5min的离心管中放于－20℃保存。
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