间充质干细胞培养细胞诱导分化时必然用到的就是培养液,配置出合适的培养液能够促进细胞的分化,因此这一步操作时相当的关键。如何才能配置适合的诱导培养液呢?济南中赛生物来介绍成骨与成脂诱导培养液的配备方法。成骨诱导培养液配备与诱导操作:1.准备含10%FBS的α-MEM培养液;2.在备好的α-MEM培养液中添加50μM 抗坏血酸, 10mmβ-磷酸甘油和100nm地塞米松;3.准备6孔培养板,将P4细胞按照5×103个/平方厘米的规格接种于原始α-MEM培养液中;4.待细胞长至基本融合后,更换上述制备完成的成骨诱导培养液;5.每三天换液一次,细胞长至7天时进行碱性磷酸酶染色;6.二十八天后再进行矿化结节的茜素红染色。茜素红染色方法介绍:1.去除细胞当前使用培养液,使用PBS清洗两次;2.使用10%甲醛室温固定15分钟,完成后使用重蒸馏水冲洗两次;3.按照1ml/孔加入40mM的茜素红染色液,室温孵育20min并轻微振荡;4.清除掉没有完全结合的染料,用重蒸馏水漂洗并振荡5min重复4次;5.倾斜放置2min,吸取多余的重蒸馏水;倒置显微镜观察拍照记录。成脂诱导培养液配备与诱导操作:1.配置FBS10%含量的HG-DMEM培养液;2.在配制完成的HG-DMEM培养液中加入1μM地塞米松,10μg/ml胰岛素,200μM吲哚美辛和0.5mM IBMX;3.准备6孔培养板,将P4细胞按照2×104个/平方厘米的规格接种于原始HG-DMEM培养液中4.待细胞长至基本融合后,更换上述制备完成的成脂诱导培养液培养2天,在用只含有10μg/ml胰岛素的成脂维持培养液培养1天,如此交替循环培养至14天,使用红油O染色。红油O染色方法介绍:1.去除细胞使用的当前培养液,使用PBS清洗两次;2.27.5%甲醛室温固定20分钟;3.重蒸馏水清洗3此,空气中干燥;4.加入0.5%的红油室温孵育一小时;5.配制70%乙醇溶液清洗3次;6.倒置显微镜观察拍照记录。
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