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酵母菌提取蛋白质的方法

酵母蛋白的提取,一下小编整理几种常用的方法供参考此方法电泳图像低丰度蛋白分辨率高,总蛋白点个数多,很好的达到了学术标准
工具/原料
1

玻璃珠破碎制备全蛋白

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单因素和正交试验设计

方法/步骤
1

一.玻璃珠破碎 Conzelmann A, Riczman H, Desponds C, BronC. 1988. A major 125 kd membraneglycoprotein of Saccharomyces cerevisiae酿酒酵母的糖蛋白通过 含肌醇磷脂。EMBOJ 7:2233+2240。 2。优化SDS样品缓冲液中蛋白质的快速提取 Horwath A,Riezman H.1994年。从Sacc酵母中快速提取蛋白质 酿酒师。酵母10:1305+1310。 样本区:                                    10毫升 0.06M Tris HCl,pH 6.8                     0.6毫升1m Tris 6.8 10%(v/v)甘油                           2毫升50%甘油 2%(w/v)十二烷基硫酸钠                2毫升10%十二烷基硫酸钠 5%(v/v)2-巯基乙醇                     0.5毫升2-巯基乙醇 0.0025%(w/v)溴苯酚蓝                  0.1毫升饱和溴苯酚蓝 4.9毫升水

2

使用前使样品缓冲液新鲜。可将冷冻在一20度的缓冲液~ 6个月。 一。隔夜培养细胞(~1x107细胞/ml;A600=0.7),收集1.5 ml细胞(调整 根据培养物的细胞密度确定的体积)在1.5毫升微乳管中(1分钟,14000xg)。 重要的是不要把细胞培养到高密度。 10微升YPD饱和oV-ernight培养液,注入5 m/SD+essential 在30度生长的野生型ce//s中,16小时的氨基酸使A600的含量为0.5到1.0 150微升YPD饱和培养液,稀释至5 m/YPD,在30℃下培养约5小时 度表示野生型细胞的A600为~0.8。 2。用水清洗1个细胞,然后再次离心收集。 三。在100微升样品缓冲液中重新培养细胞。 四。在95摄氏度下加热5分钟。 五。离心14000xg 5分钟。在SDS页面上每车道装载15微升

3

分析 酿酒酵母中的RGS蛋白,酶法。_344:617-631, 2002年。 -在步骤1至3中使用无菌技术和无菌溶液。- 一。使用饱和发酵剂培养,接种25至30毫升适当的 125毫升烧瓶中的培养基。 ***因为通常很难估计酵母的生长速度,所以 有助于开始几个25毫升的培养基,每个培养基都有不同的稀释度 发酵剂培养基(例如1:100、1:300、1:900)。 2。在30摄氏度下振荡(250转/分)直到0D600纳米~1.0(这通常是 一夜之间完成)。 ***当一次生长几个菌株时,它们很可能 达到0D600牛米~1。0在不同的时间。如果需要,叠氮化钠(100万库存 在水中,稀释至最终浓度10 mM)可添加至 一旦达到0D600 nm~1,则进行培养。0个。然后可以绘制区域性 在冰上直到其他人准备好。 三。转移至50毫升锥形管中,并在2000 x下离心10分钟 关贸总协定4 C。 四。将每个样品重新放入1毫升10毫米叠氮化钠中,并放在冰上。

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5。计算将转换为的重新悬浮单元的体积。0D600 nm读数为10。例如,如果10毫升在0D600 nm处培养=1。0已被定心并重新悬浮。***这一步骤对于平衡细胞(和蛋白质)的数量是必要的在一定体积的全细胞提取物中。6。将计算出的再悬浮细胞体积转移到一个微型胶管中在16000 x g下离心1分钟。7。吸出上清液。8。在200 ul的1X SDS-PAGE样品缓冲液中重新悬浮颗粒。9。立即放入100摄氏度的加热块中10分钟。10。让试管冷却并添加200 ul玻璃珠(Sigma,#G-8772)。11。高速涡流2分钟。第一分钟后反转。***使用泡沫管可以同时旋转多个管把他们绑在一起。12。”用21号针头在每根管子的底部戳一个孔把它放进一个新的微型胶管里。13。以2000 x g离心10秒,将液体排出底部管,把玻璃珠留在顶部管里。14。丢弃玻璃珠,并在16000 x下离心底部管g持续2分钟。这会沉积任何不溶性物质。15。将上清液转移到一个新的微乳管中。储存在-20摄氏度。16。准备使用时,在37摄氏度下加热10分钟,旋涡和离心机16000 x g,持续1分钟

注意事项

注意严格遵循温度及其反应条件

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